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Biotecnología agrícola

Una estrategia eleva la eficiencia de edición genética en maíz

Publicado el 03/10/2026
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Investigadores en China optimizaron el sistema HI-Edit con Cas12a y lograron tasas de edición de haploides de hasta 33 %, un avance dirigido a modificar líneas élite sin largos ciclos de retrocruzamiento


Redacción: Redacción Mundo Agropecuario BET
Editor: Karem Díaz S.

Un equipo internacional encabezado por investigadores de la Universidad Agrícola de China y Syngenta Biotechnology en Beijing desarrolló una estrategia que mejora de forma considerable la eficiencia de la edición genética en líneas élite de maíz. El trabajo, publicado en la edición de octubre de 2026 de Plant Biotechnology Journal, combina la inducción de haploides con una versión optimizada de la nucleasa LbCas12a y alcanzó tasas de edición de hasta 33 % en los experimentos de mayor rendimiento.

La investigación aborda una limitación importante del mejoramiento molecular: introducir directamente modificaciones precisas en germoplasma comercial de alto valor sin depender de extensos procesos posteriores de cruzamiento. El sistema estudiado, denominado HI-Edit, integra edición genómica y producción de dobles haploides para generar plantas editadas preservando el fondo genético de las líneas élite.

La posibilidad de acortar estas etapas tiene antecedentes en el propio desarrollo de la biotecnología del cereal. Mundo Agropecuario BET documentó anteriormente cómo la edición genética puede simplificar procesos utilizados para desarrollar maíz híbrido, una línea de innovación que busca reducir el tiempo necesario para incorporar características concretas al material de mejoramiento.

HI-Edit combina edición genética e inducción de haploides

La inducción de haploides permite obtener plantas que contienen un solo juego de cromosomas y posteriormente duplicarlo para producir líneas completamente homocigotas. Esta tecnología es ampliamente utilizada en programas modernos de mejoramiento porque permite fijar características genéticas con mucha mayor rapidez que mediante sucesivas generaciones de autofecundación.

HI-Edit añade a ese proceso una herramienta CRISPR. Durante la formación del cigoto, la maquinaria de edición introducida a través del progenitor inductor realiza modificaciones en el genoma que se desea mejorar. Posteriormente, los cromosomas procedentes del inductor son eliminados, mientras determinadas modificaciones realizadas previamente pueden permanecer en la planta haploide resultante.

La ventaja potencial es considerable: el material élite puede modificarse directamente sin transformar de manera convencional cada línea comercial y sin tener que trasladar después la característica editada mediante numerosas generaciones de retrocruzamiento.

El concepto se integra en una transformación más amplia de la mejora vegetal. Herramientas como CRISPR ya están siendo aplicadas a numerosos cultivos y la edición genética de trigo ha permitido modificar características bioquímicas concretas del grano, mostrando el grado de precisión que pueden alcanzar estos sistemas cuando existe un objetivo genético bien identificado.

La baja tasa de edición era el principal cuello de botella

El problema de HI-Edit era su eficiencia. La maquinaria CRISPR dispone de una ventana temporal limitada para realizar la modificación después de la fecundación y antes de que ocurra la eliminación de los cromosomas procedentes del inductor haploide.

Los investigadores se concentraron por ello en aumentar la tasa de edición de haploides, conocida como HER por sus siglas en inglés. Este indicador representa la proporción de plantas haploides que contienen la modificación genética buscada.

El equipo trabajó con LbCas12a, una nucleasa CRISPR distinta de Cas9, y evaluó diferentes estrategias para aumentar su actividad durante las primeras etapas posteriores a la fecundación.

Una de ellas consistió en utilizar una variante optimizada denominada LbCas12aV y controlar su expresión mediante promotores con elevada actividad en las células espermáticas y en los primeros estadios del cigoto. El objetivo era disponer de una mayor cantidad de la maquinaria de edición precisamente durante el corto intervalo en que puede actuar sobre el genoma de la planta receptora.

Un tratamiento térmico elevó la edición hasta 19,1 %

La segunda estrategia fue especialmente sencilla desde el punto de vista experimental: aplicar calor después de la polinización. La actividad de determinadas nucleasas Cas12a depende de la temperatura, por lo que los investigadores estudiaron si modificar temporalmente las condiciones ambientales podía incrementar la edición.

El tratamiento térmico posterior a la polinización elevó la tasa de edición de haploides hasta 19,1 %. Dependiendo del sitio genómico estudiado, el incremento llegó a ser de hasta 12 veces respecto de las condiciones utilizadas como referencia.

Este resultado muestra que la eficiencia de una herramienta de edición genética no depende únicamente de su secuencia molecular. El momento de expresión, la cantidad de proteína disponible y las condiciones en las que actúa también pueden determinar qué proporción de células termina incorporando la modificación.

La optimización técnica resulta especialmente relevante a medida que la edición genómica amplía su campo de aplicación. En Europa, por ejemplo, las nuevas reglas para cultivos obtenidos mediante técnicas genómicas están modificando el escenario regulatorio de tecnologías como CRISPR, aunque el desarrollo de cada variedad continúa dependiendo de su validación genética y agronómica.

La estabilización de Cas12a produjo otra mejora importante

El equipo ensayó además una tercera estrategia destinada a prolongar la disponibilidad de la nucleasa. Los científicos fusionaron LbCas12aV con el dominio UBA2 de la proteína RAD23 de Arabidopsis thaliana, con el propósito de mejorar la estabilidad de la proteína durante la inducción de haploides.

En condiciones normales, la fusión con UBA2 multiplicó por seis la tasa de edición en el locus Waxy1 (Wx1) y por 4,5 la correspondiente al locus Glossy2 (Gl2).

Los resultados indican que incrementar la cantidad efectiva de proteína CRISPR disponible durante la breve ventana de edición puede mejorar sustancialmente la probabilidad de obtener plantas haploides modificadas.

La combinación de herramientas moleculares con estrategias de mejoramiento acelerado forma parte de una tendencia más amplia en biotecnología vegetal. Recursos genómicos cada vez más completos, como la nueva referencia genética del centeno utilizada para ampliar las opciones de mejoramiento de cereales, proporcionan a los investigadores mapas más precisos sobre los que diseñar futuras intervenciones.

La combinación de calor y UBA2 alcanzó tasas de hasta 33 %

Los mayores valores aparecieron cuando los investigadores combinaron la estabilización de LbCas12aV mediante UBA2 con el tratamiento térmico después de la polinización.

En varios eventos dirigidos al gen Wx1, la tasa media de edición de haploides llegó al 25 %, mientras que el valor máximo alcanzó 33 %. Esto significa que, en las condiciones experimentales de mayor eficiencia, aproximadamente uno de cada tres haploides recuperados contenía la edición buscada.

Los porcentajes no deben interpretarse como una eficiencia universal aplicable automáticamente a cualquier gen, línea de maíz o cultivo. El propio estudio muestra variaciones entre sitios genómicos y eventos experimentales, por lo que cada objetivo requiere optimización y comprobación.

Sin embargo, elevar la frecuencia de plantas editadas reduce el número de individuos que deben generarse y analizarse para recuperar modificaciones útiles. Esa mejora puede resultar especialmente importante cuando HI-Edit se utiliza dentro de programas de mejoramiento que trabajan simultáneamente con numerosas líneas élite.

Editar directamente una línea élite evita reconstruir su genética

Una de las principales dificultades de la mejora genética moderna es que una línea comercial no constituye simplemente un conjunto de genes favorables independientes. Su rendimiento procede de una combinación genética seleccionada durante múltiples generaciones.

Cuando una característica obtenida en otro material se introduce mediante cruzamientos, los mejoradores deben recuperar progresivamente el fondo genético de la línea receptora. La edición directa busca evitar parte de ese proceso modificando un objetivo específico sin reconstruir después toda la combinación genética mediante retrocruzamientos.

Syngenta, una de las instituciones participantes en el estudio y desarrolladora de HI-Edit, señala que su plataforma combina edición genética con mejoramiento mediante dobles haploides para introducir características en germoplasma élite de maíz en un solo proceso. La empresa compara este enfoque con procedimientos de introgresión que pueden requerir alrededor de 2,5 años.

El desarrollo también muestra cómo las distintas tecnologías de edición empiezan a complementarse. Aunque gran parte de la divulgación agrícola se ha concentrado en Cas9, sistemas basados en Cas12a amplían los sitios genómicos accesibles y ofrecen características moleculares diferentes que pueden resultar útiles según el cultivo y el objetivo.

El método podría estudiarse en otros cultivos

Los autores consideran que el marco desarrollado puede servir para ampliar la edición de líneas élite y que sus principios podrían trasladarse a otros cultivos en los que puedan combinarse sistemas de inducción haploide y edición genómica.

La transferencia no sería automática. La eficiencia de regeneración, los mecanismos de inducción de haploides, la actividad de las nucleasas y la expresión de los promotores varían entre especies y genotipos. Por ello, las cifras obtenidas en maíz no permiten asumir el mismo rendimiento en otros cultivos.

El avance se produce además en un momento en que diferentes países están definiendo cómo regular las plantas editadas. Mundo Agropecuario BET ha seguido este proceso, incluido el debate científico en México sobre un marco específico para la edición genética agrícola.

La aportación inmediata del estudio es metodológica: demuestra que actuar simultáneamente sobre la expresión, la estabilidad de Cas12a y las condiciones ambientales posteriores a la polinización puede superar parte de la baja eficiencia que limitaba HI-Edit. Para el mejoramiento de maíz, disponer de más haploides correctamente editados acerca la edición genómica a un flujo de trabajo diseñado específicamente para modificar germoplasma élite sin perder las características que ya lo hacen agronómicamente valioso.

Fuentes referenciales:
Plant Biotechnology Journal
PubMed
Syngenta